蛋白濃度計算器是美國AAT Bioquest設計的一種在線(xiàn)即時(shí)濃度計算工具,以方便研究人員準確、便捷的進(jìn)行濃度計算。
如果已經(jīng)知道蛋白分子量和摩爾吸收系數,可以根據比爾-朗伯定律,計算溶液中蛋白的濃度。λmax 指的是吸收最強值所對應的波數,對于蛋白來(lái)說(shuō),最大吸收波數一般使用 280 nm。最大吸收波長(cháng)處的吸光率可以通過(guò)分光光度儀來(lái)測量,在測定蛋白的吸收光譜時(shí)需注意以下幾項:
1. 蛋白需要溶解完全,任何蛋白的沉淀會(huì )給濃度的測量和計算帶來(lái)偏差。
2. 吸光度的讀數不應該超過(guò)儀器的量程,導致吸收曲線(xiàn)出現平臺。如果出現這種情況,應該稀釋蛋白溶液再進(jìn)行測量。
3. 此蛋白濃度計算式是采用 1cm 標準光程作為基準,應使用 1cm 寬的石英比色皿,如果使用其它尺寸的分光皿,所測的值應予校正。
蛋白濃度計算原理
示意圖
注:濃度計算所需的所有數據均根據實(shí)際實(shí)驗及所選蛋白進(jìn)行調整(消光系數及分子量會(huì )根據您在計算工具中的蛋白選擇而自行調整)。計算工具鏈接:https://www.aatbio.com/tools/calculate-protein-concentration
操作步驟
1.選擇所要分析的蛋白,如果不是選項中的蛋白,請選擇 "custom sequence",然后輸入蛋白氨基酸序列。
2.輸入最大吸收的波長(cháng)。蛋白一般最大吸收在 280 nm。但是,不同蛋白有不同的最大吸收波長(cháng),請按儀器所測的最大吸收波
長(cháng)為準,輸入最大吸收峰處的波數。
3.如果測量使用的蛋白溶液是已稀釋的溶液,請輸入稀釋的倍數,用以計算蛋白的原始濃度。
4.如果所使用的比色皿的光程不是 1cm,請輸入正確的光程。
5.點(diǎn)擊 "計算" 后即可顯示蛋白濃度。
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